Tris Acetate-EDTA buffer, 10X

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Cat# sc-296647

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Tris Acetate-EDTA buffer, 10X

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Tris Acetate-EDTA buffer, 10X is prepared with high-quality reagents for DNA or non-denaturing RNA agarose gel electrophoresis
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ACCÈS RAPIDE AUX LIENS

Le tampon Tris Acétate-EDTA (TAE), concentration 10X, est un réactif essentiel dans la recherche en biologie moléculaire, en particulier dans l'électrophorèse et l'analyse des acides nucléiques. Cette solution tampon concentrée est méticuleusement formulée pour fournir des conditions optimales pour la séparation et la visualisation des fragments d'ADN et d'ARN sur des gels d'agarose. En recherche, le tampon TAE 10X est généralement dilué à une concentration de travail (typiquement 1X ou 0,5X) pour être utilisé dans l'électrophorèse sur gel d'agarose. Cette forme concentrée permet une plus grande flexibilité dans la conception des expériences et réduit le volume de tampon nécessaire à la préparation du gel, ce qui permet de gagner du temps et d'économiser des ressources. En outre, le tampon TAE 10X offre une capacité tampon et une conductivité accrues, facilitant une migration efficace des acides nucléiques et une résolution plus nette des bandes lors de l'électrophorèse. En outre, le tampon TAE 10X est compatible avec diverses colorations d'acides nucléiques et méthodes de visualisation, ce qui permet aux chercheurs de détecter et d'analyser avec précision les fragments d'ADN et d'ARN après l'électrophorèse. Il s'agit d'un composant essentiel dans des techniques telles que l'analyse du polymorphisme de longueur des fragments de restriction (RFLP), la détermination de la taille des fragments d'ADN et la purification des acides nucléiques à partir de gels d'agarose. Les efforts de recherche en cours visent à optimiser la formulation et la concentration du tampon TAE pour des applications spécifiques, ainsi qu'à explorer sa compatibilité avec les technologies émergentes d'analyse des acides nucléiques.


Tris Acetate-EDTA buffer, 10X Références:

  1. Improvements in gel composition and electrophoretic conditions for broad-range mutation analysis by denaturing gradient gel electrophoresis.  |  Hayes, VM., et al. 1999. Nucleic Acids Res. 27: e29. PMID: 10497279
  2. Capillary electrophoresis of DNA in the 20-500 bp range: recent developments.  |  Righetti, PG. and Gelfi, C. 1999. J Biochem Biophys Methods. 41: 75-90. PMID: 10626767
  3. The free solution mobility of DNA in Tris-acetate-EDTA buffers of different concentrations, with and without added NaCl.  |  Stellwagen, E. and Stellwagen, NC. 2002. Electrophoresis. 23: 1935-41. PMID: 12116139
  4. History and principles of conductive media for standard DNA electrophoresis.  |  Brody, JR. and Kern, SE. 2004. Anal Biochem. 333: 1-13. PMID: 15351274
  5. Electrophoresis of DNA in agarose gels, polyacrylamide gels and in free solution.  |  Stellwagen, NC. 2009. Electrophoresis. 30 Suppl 1: S188-95. PMID: 19517510
  6. Electrophoresis in agarose and acrylamide gels.  |  Ogden, RC. and Adams, DA. 1987. Methods Enzymol. 152: 61-87. PMID: 2443811
  7. Semi-Automatic Lab-on-PCB System for Agarose Gel Preparation and Electrophoresis for Biomedical Applications.  |  Urbano-Gámez, JD., et al. 2021. Micromachines (Basel). 12: PMID: 34577715
  8. The fractionation of high-molecular-weight ribonucleic acid by polyacrylamide-gel electrophoresis.  |  Loening, UE. 1967. Biochem J. 102: 251-7. PMID: 5339944
  9. Recent advances in capillary zone electrophoresis of DNA.  |  Righetti, PG. and Gelfi, C. 1998. Forensic Sci Int. 92: 239-50. PMID: 9627982
  10. Apparent pore size of polyacrylamide gels: comparison of gels cast and run in Tris-acetate-EDTA and Tris-borate-EDTA buffers.  |  Stellwagen, NC. 1998. Electrophoresis. 19: 1542-7. PMID: 9719523

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